Экспрессия глюкокортикоидных рецепторов в различных типах клеток гиппокампа и коры неонатальных крыс

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Глюкокортикоиды (ГК) являются критически важными регуляторами гомеостаза и функций организма. Несмотря на серьезные последствия, терапия глюкокортикоидами у новорожденных широко используется антенатально для ускорения созревания легких плода в случаях преждевременных родов. Действие ГК опосредуется через рецепторы глюкокортикоидов (ГР) ‒ лиганд-зависимые транскрипционные факторы. Многое известно об экспрессии ГР во взрослом мозге, однако, информации о специфичности и идентичности клеток, в которых экспрессируются ГР в неонатальном мозге, не так много. В этой работе мы исследовали колокализацию ГР с основными маркерами нейронов и астроцитов в мозге новорожденных крысят. Иммуногистохимически мы выявили в поле CA1 гиппокампа и энторинальной коре экспрессию ГР и маркеров кортикальных проекционных нейронов – SATB2 и NURR1; маркеров интернейронов – кальретенина и маркеров астроцитов – GFAP. Самые высокие коэффициенты колокализации наблюдались у ГР с кальретенином. С маркером проекционных нейронов, который также является фактором транскрипции, коэффициенты колокализации увеличивались до тех же значений, что и для ГР с кальретенином, через 6 ч после инъекции дексаметазона, когда ГР транслоцировались в ядро. Таким образом, анализ показал, что в мозге неонатальных крысят ГР больше локализован в нейронах, чем в астроцитах.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. А. Ланшаков

ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН; Новосибирский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

сектор постгеномной нейробиологии, факультет естественных наук

Россия, Новосибирск; Новосибирск

У. С. Дрозд

ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН; Новосибирский государственный университет

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

сектор постгеномной нейробиологии, факультет естественных наук

Россия, Новосибирск; Новосибирск

Н. Н. Дыгало

Новосибирский государственный университет; 3ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

факультет естественных наук, лаборатория функциональной нейрогеномики

Россия, Новосибирск; Новосибирск

Список литературы

  1. Yudt M.R. and Cidlowski J.A. // Mol. Endocrin. 2002. V. 16. P. 1719–1726.
  2. Tronche F., Kellendonk C., Kretz O., Gass P., Anlag K., Orban P.C., Bock R., Klein R., and Schütz G. // Nat Genet. 1999. V. 23. P. 99–103.
  3. Kellendonk C., Tronche F., Reichardt H.M., and Schütz G. // J. Ster. Biochem. Mol. Biol. 1999. V. 69. P. 253–259.
  4. Kellendonk C., Gass P., Kretz O., Schütz G., and Tronche F. // Brain Res Bull. 2002. V. 57. P. 73–83.
  5. Doyle L.W., Ehrenkranz R.A., and Halliday H.L. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2014), p. CD001145.pub3.
  6. Halliday H.L., Ehrenkranz R.A., and Doyle L.W. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2009), p. CD001146.pub2.
  7. Nguon. K., Baxter M.G., and Sajdel‐Sulkowska E.M. // The Cerebell. 2005. V. 4. P. 112–122.
  8. Bhatt A.J., Feng Y., Wang J., Famuyide M., and Hersey K. // J. of Neurosci. Res. 2013. V. 91. P. 1191–1202.
  9. Holson R.R., Gough B., Sullivan P., Badger T., and Sheehan D.M. // Neurotoxicology and Teratology. 1995. V. 17. P. 393–401.
  10. Hossain A., Hajman K., Charitidi K., Erhardt S., Zimmermann U., Knipper M., and Canlon B. // Endocrin. 2008. V. 149. P. 6356–6365.
  11. Nagano M., Ozawa H., and Suzuki H. // Neurosc. Res. 2008. V. 60. P. 364–371.
  12. Aronsson M., Fuxe K., Dong Y., Agnati L.F., Okret S., and Gustafsson J.A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 9331–9335.
  13. Ábrahám I., Juhász G., Kékesi K.A., and Kovács K.J. // Brain Res. 1996. V. 733. P. 56–63.
  14. Takeda A., Suzuki M., Tamano H., Takada S., Ide K., and Oku N. // Neuroch. Intl. 2012. V. 60. P. 394–399.
  15. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2014. V. 62.
  16. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2011. V. 52.
  17. Adler J. and Parmryd I. // PLoS ONE. 2014. V. 9. P. e111983.
  18. Adler J. and Parmryd I. // Cyt. Pt A. 2010. V. 77A. P. 733–742.
  19. Dunn K.W., Kamocka M.M., and McDonald J.H. // Am. J. of Phys.-Cell Phys. 2011. V. 300. P. C723–C742.
  20. Varga J., Ferenczi S., Kovács K.J., Garafova A., Jezova D., and Zelena D. // PLoS ONE. 2013. V. 8. P. e72313.
  21. Bohn M.C., Dean D., Hussain S., and Giuliano R. // Dev. Brain Res. 1994. V. 77. P. 157–162.
  22. Tsiarli M.A., Paula Monaghan A., and DeFranco D.B. // Brain Res. 2013. V. 1523. P. 10–27.
  23. Vernocchi S., Battello N., Schmitz S., Revets D., Billing A.M., Turner J.D., and Muller C.P. // Mol. & Cell. Prot. 2013. V. 12. P. 1764–1779.
  24. Gutièrrez-Mecinas M., Trollope A.F., Collins A., Morfett H., Hesketh S.A., Kersanté F., and Reul J.M.H.M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. V. 108. P. 13806–13811.
  25. Papadopoulos A., Chandramohan Y., Collins A., Droste S.K., Nutt D.J., and Reul J.M.H.M. // Eur. Neuropsych. 2011. V. 21. P. 316–324.
  26. Trollope A.F., Gutièrrez-Mecinas M., Mifsud K.R., Collins A., Saunderson E.A., and Reul J.M.H.M. // Exp. Neurol. 2012. V. 233. P. 3–11.
  27. Ben-Ari Y. // Nat Rev Neurosci. 2002. V. 3. P. 728–739.
  28. Lanshakov D.A., Sukhareva E.V., Kalinina T.S., and Dygalo N.N. // Neur. of Dis. 2016. V. 91. P. 1–9.
  29. Britanova O., Akopov S., Lukyanov S., Gruss P., and Tarabykin V. // Eur J of Neurosc. 2005. V. 21. P. 658–668.
  30. Baranek C., Dittrich M., Parthasarathy S., Bonnon C.G., Britanova O., Lanshakov D., Boukhtouche F., Sommer J.E., Colmenares C., Tarabykin V., and Atanasoski S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012. V. 109. P. 3546–3551.
  31. Alcamo E.A., Chirivella L., Dautzenberg M., Dobreva G., Farinas I., Grosschedl R., and McConnell S.K. // Neur. 2008. V. 57. P. 364–377.
  32. Britanova O., De Juan Romero C., Cheung A., Kwan K.Y., Schwark M., Gyorgy A., Vogel T., Akopov S., Mitkovski M., Agoston D., Šestan N., Molnár Z., and Tarabykin V. // Neur. 2008. V. 57. P. 378–392.
  33. Bae E.-J., Lee H.-S., Park C.-H., and Lee S.-H. // FEBS Let. 2009. V. 583. P. 1505–1510.
  34. Perlmann T. and Wallén-Mackenzie Å. // Cell Tissue Res. 2004. V. 318. P. 45–52.
  35. Hoerder-Suabedissen A., Oeschger F.M., Krishnan M.L., Belgard T.G., Wang W.Z., Lee S., Webber C., Petretto E., Edwards A.D., and Molnár Z. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013. V. 110. P. 3555–3560.
  36. Hoerder-Suabedissen A. and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2013. V. 23. P. 1473–1483.
  37. Oeschger F.M., Wang W.-Z., Lee S., García-Moreno F., Goffinet A.M., Arbonés M.L., Rakic S., and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2012. V. 22. P. 1343–1359.
  38. Tolner E.A., Sheikh A., Yukin A.Y., Kaila K., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 692–702.
  39. Viswanathan S., Bandyopadhyay S., Kao J.P.Y., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 1589–1601.
  40. Friauf E., McConnell S., and Shatz C. // J. Neurosci. 1990. V. 10. P. 2601–2613.
  41. McConnell S., Ghosh A., and Shatz C. // J. Neurosci. 1994. V. 14. P. 1892–1907.
  42. McConnell S.K., Ghosh A., and Shatz C J. // Sci. 1989. V. 245. P. 978–982.
  43. Wang Z., Benoit G., Liu J., Prasad S., Aarnisalo P., Liu X., Xu H., Walker N.P.C., and Perlmann T. // Nat. 2003. V. 423. P. 555–560.
  44. Yu S., Yang S., Holsboer F., Sousa N., and Almeida O.F.X. // PLoS ONE. 2011. V. 6. P. e22419.
  45. Wyrwoll C.S., Holmes M.C., and Seckl J.R. // Front in Neuroendo. 2011. V. 32. P. 265–286.
  46. Rosewicz S., McDonald A.R., Maddux B.A., Goldfine I.D., Miesfeld R.L., and Logsdon C.D. // J. of Biol. Chem. 1988. V. 263. P. 2581–2584.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Схема эксперимента. Стрелкой обозначен забор материала.

Скачать (58KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Экспрессия ГР в мозге неонатальных крысят на 3 день жизни. ГР – зеленый, Alexa 488. На панорамных изображениях окрашивания по ГР (1А) область СА1 гиппокампа и энторинальная кора отмечены белыми рамками. Шкала 500 мкм.

Скачать (544KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Изображения двойного иммунофлуоресцентного окрашивания ГР (зеленый, Alexa 488) и маркеров клеточных типов (красный, Alexa 568), снятые при помощи объектива с высокой числовой апертурой и 40-кратным увелечением в области СА1 гиппокампа (а) и энторинальной коре (б). Места колокализации отмечены белыми треугольниками. Шкала 50 мкм.

Скачать (656KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Изображения двойного иммунофлуоресцентного окрашивания ГР (зеленый, Alexa 488) и маркеров клеточных типов (красный, Alexa 568), снятые при помощи объектива с высокой числовой апертурой и 40-кратным увелечением в энторинальной коре до (а) и после (б) введения DEX. ГР транслоцировались в ядро клетки через 6 часов после введения DEX в энторинальную кору. Шкала 50 мкм.

Скачать (779KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024