Состав и митогенная активность полисахарида из Solanum tuberosum L.

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Полисахарид STP был выделен из водного экстракта Solanum tuberosum L. и очищен с помощью ионообменной хроматографии и гель-фильтрации. Его молекулярную массу определяли с помощью гельпроникающей хроматографии и высокоэффективной жидкостной хроматографии, а его моносахаридный состав анализировали методами высокоэффективной жидкостной хроматографии и газовой хроматографии с использованием пламенно-ионизационного детектора и капиллярной колонки. Было показано, что полисахарид STP состоял из галактозы и арабинозы в количествах 37.5% и 23.5% соответственно, а также уроновых кислот (9.7%), остатков моносахарида глюкозы (15%) и белков (не менее 9%). Молекулярная масса STP составляла 70 кДа. Для структурного анализа STP использовали метод ИК-Фурье-спектроскопии. Митогенная активность экстрагированного полисахарида сравнима с активностью липополисахарида.

Об авторах

Е. А Генералов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова;Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)

Москва, Россия

Л. В Яковенко

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

Список литературы

  1. M. E. Camire, S. Kubow, and D. J. Donnelly, Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 49 (10), 823 (2009).
  2. M. Kujawska, A. Olejnik, G. Lewandowicz, et al., Nutrients, 10 (2), 259 (2018).
  3. J. E. Vlachojannis, M. Cameron, and S. Chrubasik, Phytother. Res., 24 (2), 159 2010.
  4. H. Chen, J. Sun, J. Liu, et al., Int. J. Biol. Macromol., 131, 484 (2019).
  5. S. Chrubasik, T. Boyko, Y. Filippov, and T. Torda, Phytomedicine, 13 (8), 596 (2006).
  6. M. G. Basilicata, G. Pepe, S. F. Rapa, et al., Int. J. Mol. Sci., 20 (23), 6087 (2019).
  7. W. G. Jardine, C. H. L. Doeswijk-Voragen, I. M. R. MacKinnon, et al., J. Sci. Food Agric., 82 (8), 834 (2002).
  8. D. T. Do, J. Singh, I. Oey, and H. Singh. Food Hydrocolloids, 108, 105972 (2020).
  9. M. C. Jarvis, M. A. Hall, D. R. Threlfall, J. Friend, Planta, 152 (2), 93 (1981).
  10. A. I. Usov, M. I. Bilan, and N. G. Klochkova, Botanica Marina, 38, 43 (1995).
  11. M. M. Bradford, Anal. Biochem., 72 (1-2), 248 (1976).
  12. R. Hori and J. Sugiyama, Carbohydr. Polym., 52 (4), 449 (2003).
  13. N. K. Jerne, A. A. Nordin, Science. 140 (3565), 405 (1963).
  14. W. S. York, A. G. Darvill, M. McNeil, et al., in Methods in Enzymology, vol. 118, Plant Molecular Biology, Ed. by A. Weissbach and H. Weissbach (Acad. Press, London, New York, San Diego, 1986), pp. 3-40.
  15. C. C. Sweeley, R. V. P. Tao, in Methods in Carbohydrate Chemistry, Ed. by R. L. Whistler (Acad. Press, London, New York, San Diego, 1972), pp. 23-25.
  16. C. C. Sweeley, R. Bentley, M. Makita, and W. W. Wells, J. Am. Chem. Soc., 85 (16), 2497 (1963).
  17. M. DuBois, K. A. Gilles, J. K. Hamilton, et al., Anal. Chem., 28 (3), 350 (1956).
  18. K. Wilson, and J. Walker, Principles and Techniques of Practical Biochemistry (Cambridge University Press, Cambridge, 2000).
  19. M. Cerna, A. S. Barros, A. Nunes, et al., Carbohydr. Polym., 51 (4), 383 (2003).

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2023