Антиоксидантная активность конъюгатов наночастиц диоксида церия с сывороточным альбумином человека, выделенным из биологических жидкостей
- Авторы: Созарукова М.М.1, Проскурнина Е.В.2, Баранчиков А.Е.1, Иванов В.К.1
- 
							Учреждения: 
							- Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
- Медико-генетический научный центр им. академика Н.П. Бочкова
 
- Выпуск: Том 68, № 10 (2023)
- Страницы: 1504-1512
- Раздел: НЕОРГАНИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ И НАНОМАТЕРИАЛЫ
- URL: https://cardiosomatics.ru/0044-457X/article/view/666205
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0044457X23600871
- EDN: https://elibrary.ru/NVRESL
- ID: 666205
Цитировать
Полный текст
 Открытый доступ
		                                Открытый доступ Доступ предоставлен
						Доступ предоставлен Доступ платный или только для подписчиков
		                                							Доступ платный или только для подписчиков
		                                					Аннотация
Впервые проведен анализ антиоксидантных свойств конъюгатов наночастиц СеО2 с сывороточным альбумином человека (СеО2@САЧ), в том числе выделенных из плазмы крови и близких по составу к плазме крови биологических жидкостей: перитонеальной (асцитическая) и синовиальной (суставная). Антиоксидантная активность гибридных наноматериалов исследована по отношению к алкилпероксильным радикалам методом люминолзависимой хемилюминесценции. Показано, что при взаимодействии наночастиц СеО2 с очищенным сывороточным альбумином человека происходит снижение антиоксидантного и прооксидантного потенциала альбумина в ⁓1.5 раза. Предположительно, этот эффект обусловлен взаимодействием нанодисперсного СеО2 с сульфгидрильными группами белка. Конъюгаты наночастиц СеО2 с альбумином из биологических жидкостей (СеО2@САЧ) проявляют синергетический антиоксидантный эффект. В этом случае реализуется принципиально другой механизм антиоксидантной активности по сравнению с золями СеО2, модифицированными очищенным сывороточным альбумином человека. Согласно количественной оценке, антиоксидантная емкость конъюгатов СеО2@САЧ в ⁓20 раз ниже, чем у водорастворимого аналога витамина Е – тролокса.
Ключевые слова
Об авторах
М. М. Созарукова
Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
														Email: S_MadinaM@bk.ru
				                					                																			                												                								Россия, 119991, Москва, Ленинский пр-т, 31						
Е. В. Проскурнина
Медико-генетический научный центр им. академика Н.П. Бочкова
														Email: S_MadinaM@bk.ru
				                					                																			                												                								Россия, 115522, Москва, ул. Москворечье, 1						
А. Е. Баранчиков
Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
														Email: S_MadinaM@bk.ru
				                					                																			                												                								Россия, 119991, Москва, Ленинский пр-т, 31						
В. К. Иванов
Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
							Автор, ответственный за переписку.
							Email: S_MadinaM@bk.ru
				                					                																			                												                								Россия, 119991, Москва, Ленинский пр-т, 31						
Список литературы
- Hong S., Choi D.W., Kim H.N. et al. // Pharmaceutics. 2020. V. 12. № 7. P. 604. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12070604
- Ritz S., Schöttler S., Kotman N. et al. // Biomacromolecules. 2015. V. 16. № 4. P. 1311. https://doi.org/10.1021/acs.biomac.5b00108
- Saptarshi S.R., Duschl A., Lopata A.L. // J. Nanobiotechnology. 2013. V. 11. № 1. P. 26. https://doi.org/10.1186/1477-3155-11-26
- Ostroushko A.A., Gagarin I.D., Danilova I.G. et al. // Nanosyst. Physics. Chem. Math. 2019. P. 318. https://doi.org/10.17586/2220-8054-2019-10-3-318-349
- Ke P.C., Lin S., Parak W.J. et al. // ACS Nano. 2017. V. 11. № 12. P. 11773. https://doi.org/10.1021/acsnano.7b08008
- Kopac T. // Int. J. Biol. Macromol. 2021. V. 169. P. 290. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2020.12.108
- Lundqvist M., Stigler J., Cedervall T. et al. // ACS Nano. 2011. V. 5. № 9. P. 7503. https://doi.org/10.1021/nn202458g
- Zanganeh S., Spitler R., Erfanzadeh M. et al. // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2016. V. 75. P. 143. https://doi.org/10.1016/j.biocel.2016.01.005
- Wu Y.-Z., Tsai Y.-Y., Chang L.-S. et al. // Pharmaceuticals. 2021. V. 14. № 11. P. 1071. https://doi.org/10.3390/ph14111071
- Lynch I., Dawson K.A. // Nano Today. 2008. V. 3. № 1–2. P. 40. https://doi.org/10.1016/S1748-0132(08)70014-8
- Corbo C., Molinaro R., Tabatabaei M. et al. // Biomat. Sci. 2017. V. 5. № 3. P. 378. https://doi.org/10.1039/c6bm00921b
- Hajipour M.J., Laurent S., Aghaie A. et al. // Biomat. Sci. 2014. V. 2. № 9. P. 1210. https://doi.org/10.1039/C4BM00131A
- Colapicchioni V., Tilio M., Digiacomo L. et al. // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2016. V. 75. P. 180. https://doi.org/10.1016/j.biocel.2015.09.002
- Mahmoudi M., Lynch I., Ejtehadi M.R. et al. // Chem. Rev. 2011. V. 111. № 9. P. 5610. https://doi.org/10.1021/cr100440g
- Monopoli M.P., Walczyk D., Campbell A. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2011. V. 133. № 8. P. 2525. https://doi.org/10.1021/ja107583h
- Park S.J. // Int. J. Nanomedicine. 2020. V. 15. P. 5783. https://doi.org/10.2147/IJN.S254808
- Shang W., Nuffer J.H., Dordick J.S. et al. // Nano Lett. 2007. V. 7. № 7. P. 1991. https://doi.org/10.1021/nl070777r
- Tenzer S., Docter D., Kuharev J. et al. // Nat. Nanotechnol. 2013. V. 8. № 10. P. 772. https://doi.org/10.1038/nnano.2013.181
- Ivanov V.K., Polezhaeva O.S., Tret’yakov Y.D. // Russ. J. Gen. Chem. 2010. V. 80. № 3. P. 604. https://doi.org/10.1134/S1070363210030412
- Singh S. // Biointerphases. 2016. V. 11. № 4. P. 04B202. https://doi.org/10.1116/1.4966535
- Shcherbakov A.B., Reukov V.V., Yakimansky A.V. et al. // Polymers (Basel). 2021. V. 13. № 6. P. 924. https://doi.org/10.3390/polym13060924
- Popov A.L., Shcherbakov A.B., Zholobak N.M. et al. // Nanosyst. Physics. Chem. Math. 2017. P. 760. https://doi.org/10.17586/2220-8054-2017-8-6-760-781
- Ivanov V.K., Usatenko A.V., Shcherbakov A.B. // Russ. J. Inorg. Chem. 2009. V. 54. № 10. P. 1522. https://doi.org/10.1134/S0036023609100039
- Heckert E.G., Karakoti A.S., Seal S. et al. // Biomaterials. 2008. V. 29. № 18. P. 2705. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2008.03.014
- Korsvik C., Patil S., Seal S. et al. // Chem. Commun. 2007. № 10. P. 1056. https://doi.org/10.1039/b615134e
- Sozarukova M.M., Shestakova M.A., Teplonogova M.A. et al. // Russ. J. Inorg. Chem. 2020. V. 65. № 4. P. 597. https://doi.org/10.1134/S0036023620040208
- Sozarukova M.M., Proskurnina E.V., Baranchikov A.E. et al. // Nanosyst. Physics. Chem. Math. 2020. V. 11. № 3. P. 324. https://doi.org/10.17586/2220-8054-2020-11-3-324-332
- Pirmohamed T., Dowding J.M., Singh S. et al. // Chem. Commun. 2010. V. 46. № 16. P. 2736. https://doi.org/10.1039/b922024k
- Wei X., Li X., Feng Y. et al. // RSC Adv. 2018. V. 8. № 21. P. 11764. https://doi.org/10.1039/C8RA00622A
- Sozarukova M.M., Proskurnina E.V., Ivanov V.K. // Nanosyst. Physics. Chem. Math. 2021. V. 12. № 3. P. 283. https://doi.org/10.17586/2220-8054-2021-12-3-283-290
- Filippova A.D., Sozarukova M.M., Baranchikov A.E. et al. // Molecules. 2023. V. 28. № 9. P. 3811. https://doi.org/10.3390/molecules28093811
- Filippova A.D., Sozarukova M.M., Baranchikov A.E. et al. // Russ. J. Inorg. Chem. 2022. V. 67. № 12. P. 1948. https://doi.org/10.1134/S0036023622601581
- Sozarukova M.M., Proskurnina E.V., Popov A.L. et al. // RSC Adv. 2021. V. 11. № 56. P. 35351. https://doi.org/10.1039/D1RA06730C
- Liu W., Rose J., Plantevin S. et al. // Nanoscale. 2013. V. 5. № 4. P. 1658. https://doi.org/10.1039/c2nr33611a
- Khoshgozaran Roudbaneh S.Z., Kahbasi S., Sohrabi M.J. et al. // J. Mol. Liq. 2019. V. 296. P. 111839. https://doi.org/10.1016/j.molliq.2019.111839
- Simón-Vázquez R., Lozano-Fernández T., Peleteiro-Olmedo M. et al. // Colloids Surf., B: Biointerfaces. 2014. V. 113. P. 198. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2013.08.047
- Roche M., Rondeau P., Singh N.R. et al. // FEBS Lett. 2008. V. 582. № 13. P. 1783. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2008.04.057
- Quinlan G.J., Martin G.S., Evans T.W. // Hepatology. 2005. V. 41. № 6. P. 1211. https://doi.org/10.1002/hep.20720
- Pilati D., Howard K.A. // Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 2020. V. 16. № 9. P. 783. https://doi.org/10.1080/17425255.2020.1801633
- Larsen M.T., Kuhlmann M., Hvam M.L. et al. // Mol. Cell. Ther. 2016. V. 4. P. 3. https://doi.org/10.1186/s40591-016-0048-8
- Shcherbakov A.B., Teplonogova M.A., Ivanova O.S. et al. // Mater. Res. Express. 2017. V. 4. № 5. P. 055008. https://doi.org/10.1088/2053-1591/aa6e9a
- Colantonio D.A., Dunkinson C., Bovenkamp D.E. et al. // Proteomics. 2005. V. 5. № 15. P. 3831. https://doi.org/10.1002/pmic.200401235
- Alekseev A.V., Proskurnina E.V., Vladimirov Y.A. // Moscow Univ. Chem. Bull. 2012. V. 67. № 3. P. 127. https://doi.org/10.3103/S0027131412030029
- Vorokh A.S. // Nanosyst. Physics. Chem. Math. 2018. P. 364. https://doi.org/10.17586/2220-8054-2018-9-3-364-369
- Proskurnina E.V., Polimova A.M., Sozarukova M.M. et al. // Bull. Exp. Biol. Med. 2016. V. 161. № 1. P. 131. https://doi.org/10.1007/s10517-016-3362-x
- Sozarukova M.M., Polimova A.M., Proskurnina E.V. et al. // Biofizika. 2016. V. 61. № 2. P. 337.
- Baba S.P., Bhatnagar A. // Curr. Opin. Toxicol. 2018. V. 7. P. 133. https://doi.org/10.1016/j.cotox.2018.03.005
- Ulrich K., Jakob U. // Free Radic. Biol. Med. 2019. V. 140. P. 14. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2019.05.035
- Winther J.R., Thorpe C. // Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1840. № 2. P. 838. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2013.03.031
- Пойменова Ю.А., Созарукова М.М., Проскурнина Е.В. // Современные проблемы медицинской биохимии. Сб. статей участников Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию проф. В.К. Кухты, Минск, 2022. С. 224.
- Han G.-C., Peng Y., Hao Y.-Q. et al. // Anal. Chim. Acta. 2010. V. 659. № 1–2. P. 238. https://doi.org/10.1016/j.aca.2009.11.057
- Rollin-Genetet F., Seidel C., Artells E. et al. // Chem. Res. Toxicol. 2015. V. 28. № 12. P. 2304. https://doi.org/10.1021/acs.chemrestox.5b00319
- Rosenoer M. // Albumin: Structure, Function and Uses, Elsevier, 2014. https://www.elsevier.com/books/albumin-structure-function-and-uses/rosenoer/978-0-08-019603-9 (accessed May 11, 2023).
- Kragh-Hansen U., Chuang V.T.G., Otagiri M. // Biol. Pharm. Bull. 2002. V. 25. № 6. P. 695. https://doi.org/10.1248/bpb.25.695
- Rabbani G., Ahn S.N. // Int. J. Biol. Macromol. 2019. V. 123. P. 979. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.11.053
- Arts M.J.T., Haenen G.R.M., Voss H.-P. et al. // Food Chem. Toxicol. 2004. V. 42. № 1. P. 45. https://doi.org/10.1016/j.fct.2003.08.004
- Richard D., Kefi K., Barbe U. et al. // Pharmacol. Res. 2008. V. 57. № 6. P. 451. https://doi.org/10.1016/j.phrs.2008.05.002
- Singh S., Dosani T., Karakoti A.S., Kumar A. et al. // Biomater. 2011. V. 32. № 28. P. 6745. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2011.05.073
- Teichroeb J.H., Forrest J.A., Jones L.W. // Eur. Phys. J. E. 2008. V. 26. № 4. P. 411. https://doi.org/10.1140/epje/i2007-10342-9
- Engelborghs Y. // J. Fluor. 2003. V. 13. № 1. P. 9. https://doi.org/10.1023/A:1022398329107
- Ghisaidoobe A.B.T., Chung S.J. // Int. J. Mol. Sci. 2014. V. 15. № 12. P. 22518. https://doi.org/10.3390/ijms151222518
- Vivian J.T., Callis P.R. // Biophys. J. 2001. V. 80. № 5. P. 2093. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(01)76183-8
Дополнительные файлы
 
				
			 
						 
						 
						 
					 
						 
									

 
  
  
  Отправить статью по E-mail
			Отправить статью по E-mail 







