Кариотип черноморского гребешка (Flexopecten glaber ponticus, Bivalvia, Pectinidae)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Изучали морфометрические характеристики мейотических и митотических хромосом черноморского гребешка (Flexopecten glaber ponticus (Bucquoy, Dautzenberg & Dollfus, 1889)) в яйцеклетках и эмбрионах с использованием метода окрашивания препаратов ацетоорсеином. Установлено, что в метафазе I и метафазе II мейоза насчитывается по 14 бивалентов. Кариотип гребешка состоит из 28 хромосом: двух пар крупных субтелоцентрических (пары 1–2), трех пар субметацентрических (пары 3–5) и девяти пар метацентрических хромосом (пары 6–14). Средняя длина гомологичных хромосом варьирует от 1.87 до 5.30 мкм. Суммарная длина гаплоидного набора хромосом 44.90 мкм. Полученные результаты позволяют идентифицировать пары хромосом черноморского гребешка и построить идиограмму, пригодную для сравнения с кариотипом средиземноморского гребешка (F. glaber).

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. В. Пиркова

ФГБУН ФИЦ “Институт биологии южных морей имени А. О. Ковалевского РАН”

Автор, ответственный за переписку.
Email: avpirkova@mail.ru
Россия, Севастополь

Список литературы

  1. Баршене Я.В., 1990. Изучение хромосомных комплексов // Методы изучения двустворчатых моллюсков / Гл. ред. Скарлато О.А. Ленинград: Зоологический институт АН СССР. С. 37–45.
  2. Головина И.В., 2016. Особенности активности ферментов энергетического обмена в тканях черноморских моллюсков различной подвижности в норме и при патологии // Морской биологический журнал. № 1. С. 14–23. https://doi.org/10.21072/mbj.2016.01.1.02
  3. Дарлингтон С.Д., Ла Кур Л.Ф., 1980. Хромосомы. Методы работы. Пер. с англ. М.: Атомиздат. 181 с.
  4. Ладыгина Л.В., Пиркова А.В., 2024. Динамика линейных и весовых параметров черноморского гребешка Flexopecten glaber ponticus (Bucquoy, Dautzenberg, Dollfus, 1889) при садковом выращивании // Экологическая безопасность прибрежной и шельфовой зон моря. № 2. С. 153–164.
  5. Лакин Г.Ф., 1973. Биометрия. М.: Высшая школа. 342 с.
  6. Пиркова А.В., Ладыгина Л.В., 2017. Мейоз, эмбриональное и личиночное развитие черноморского гребешка Flexopecten glaber ponticus (Bucquoy, Dautzenberg, Dollfus, 1889) (Bivalvia, Pectinidae) // Морской биологический журнал. Вып. 2. № 4. С. 50–57.
  7. Ревков Н.К., 2015. Черноморский гребешок Flexopecten glaber ponticus (Bucquoy, Dautzenberg et Dollfus, 1889) // Красная книга Республики Крым. Животные. Отв. ред. Иванов С.П., Фатерига А.В. Симферополь: АРИАЛ. С. 39.
  8. Ревков Н.К., 2018. Черноморский гребешок Flexopecten glaber (Linnaeus, 1758). Красная книга Севастополя. Отв. ред. Довгаль И.В., Корженьевский В.В. Калининград – Севастополь: РОСТ-ДОАФК. С. 347.
  9. Ревков Н.К., Пиркова А.В., Тимофеев В.А., Ладыгина Л.В., Щуров С.В., 2021. Рост и морфометрические особенности гребешка Flexopecten glaber (Bivalvia: Pectenidae) при садковом выращивании у берегов Крыма (Черное море) // Ruthenica: Русский малакологический журнал. Т. 31. № 3. С. 127–138. https://sci-info.marine-research.org/biblios/2156
  10. Скарлато О.А., Старобогатов Я.И., 1972. Класс двустворчатые моллюски – Bivalvia // Определитель фауны Черного и Азовского морей. Т. 3. Свободноживущие беспозвоночные. Киев: Наукова думка. С. 178–250.
  11. Хроменкова Ю.Б., 2012. Морфология хромосом. Кариотип человека. Харьков: ХНМУ. 16 с.
  12. Щербань С.А., Мельник А.В., 2020. Размерно-возрастные характеристики и фенотипические особенности соматического роста черноморского моллюска Flexopecten glaber ponticus (Bivalvia, Pectinidae) // Зоологический журнал. Вып. 99. № 4. С. 363–372. https://doi.org/10.31857/S0044513420040091
  13. Beaumont A.R., Gruffydd L.L.D., 1974. Studies on the chromosomes of the scallop Pecten maximus (L.) and related species // Journal Marine Biological Association U.K. V. 54. P. 713–718.
  14. Berik N., Çankiriligil E.C., Gül G., 2017а. Meat yield and shell dimension of smooth scallop (Flexopecten glaber) caught from Çardak Lagoon in Canakkale, Turkey // Journal of Aquaculture & Marine Biology. V. 5. № 3. P. 00122. https://doi.org/10.15406/jamb.2017.05.00122
  15. Berik N., Çankiriligil E., Gül G., 2017b. Mineral content of smooth scallop (Flexopecten glaber) caught Canakkale, Turkey and evaluation in terms of food safety // Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. V. 42. P. 97–102. https://doi.org/10.1016/j. jtemb.2017.04.011
  16. Bondarev I.P., 2018. Taxonomic status of Flexopecten glaber ponticus (Bucquoy, Dautzenberg & Dollfus, 1889) – the Black Sea Flexopecten glaber (Linnaeus, 1758) (Bivalvia: Pectinidae) // Marine Biological Journal. V. 3. № 4. P. 29–35. https://doi.org/10.21072/ mbj.2018.03.4.03
  17. Galindo-Torresa P., García-Gascab A., Llera-Herrerab R., Escobedo-Fregosoa C., Abreu-Goodgerd C., Ibarraa A.M., 2018. Sex determination and differentiation genes in a functional hermaphrodite scallop, Nodipecten subnodosus // Marine Genomics. V. 37. P. 161–175.
  18. Gözler A.M., Tarkan A.N., 2000. Reproductive biology of Ruditapes decussatus // Turkish Journal of Marine Sciences. V. 6. № 2. P. 175–198.
  19. Ibarra A., Alfonsi C., Perez J.E., 2011. Genética y biotecnologías para el mejoramiento del cultivo y la conservación del recurso Nodipecten spp. // Biología y cultivo de los moluscos pectinidos del genero Nodipecten. Maeda-Martinez A.N., Ceijo-Lodeiros C. (Ed.). La Paz. Limusa – Centro de Investigaciones Biologicas del Noroeste, S.C., Mexico. P. 135–144.
  20. Insua A., López-Piñón M.J., Méndez J., 1998. Characterization of Aequipecten opercularis (Bivalvia: Pectinidae) chromosomes by different staining techniques and fluorescent in situ hybridization // Genes Genetic Systems. V. 73. P. 193–200. https://doi.org/10.1266/ggs.73.193
  21. Insua A., Lopez-Pinon M. J., Freire R., Mendez J., 2006. Karyotype and chromosomal location of 18S-28S and 5S ribosomal DNA in the scallops Pecten maximus and Mimachlamys varia (Bivalvia: Pectinidae) // Genetica. V. 126. P. 291–301. https://doi.org/10.1007/s10709-005-7408-7
  22. Kapranov S.V., Kovrigina N.P., Troshchenko O.A., Rodionova N. Yu., 2020. Long-term variations of thermohaline and hydrochemical characteristics in the mussel farm area in the coastal waters off Sevastopol (Black Sea) in 2001–2018 // Continental Shelf Research. V. 206. P. 1–15. 104185. https://doi.org/10.1016/j.csr.2020.104185
  23. Komaru A., Wada K.T., 1985. Karyotypes of four species in the Peсtinidae (Bivalvia: Pteriomorphia) // Venus (Jap. Journal Mаlacology). V. 44. № 4. P. 249–259.
  24. Levan A., Fredga K., Sandberg A., 1964. Nomenclature for centromeric position on chromosomes // Hereditas. № 52. P. 201–220. https://doi.org/10.1111/j.1601-5223.1964.tb01953.xс
  25. Marčeta T., Da Ros L., Marin M.G., Codognotto V.F., Bressan M., 2016. Overview of the biology of Flexopecten glaber in the North Western Adriatic Sea (Italy): A good candidate for future shellfish farming aims? // Aquaculture. V. 462. P. 80–91.
  26. Pauls E., Affonso P.R., 2000. The karyotype of Nodipecten nodosus (Bivalvia: Pectinidae) // Hydrobiologia. V. 420. P. 99–102.
  27. Pisor D., Poppe G., 2008. Registry of World record size shells. Conchbooks. 208 p.
  28. Pujolar J.M., Marčeta T., Saavedra C., Bressan M., Zane L., 2010. Inferring the demographic history of the Adriatic Flexopecten complex // Molecular Phylogenetics and Evolution. V. 57. № 2. P. 942–947. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2010.08.002
  29. Slynko Yu.V., Slynko E.E., Schurov S.V., Ryabushko V.I., 2020. The Black Sea Flexopecten species-complex (Mollusca: Bivalvia: Pectinidae): shell morphology and 16S rDNA variation // Ecologica Montenegrina. V. 32. P. 10–18.
  30. Thiriot-Quiévreux C., 1982. Les caryotypes de quelques espèces de bivalves et de gastéropodes marins // Marine Biology. V. 70. P. 165–172.
  31. Thiriot-Quiévreux C., 2002. Review of the literature on bivalve cytogenetic in the last ten years // Can. Biology Marine. V. 43. P. 17–26.
  32. Wang Y., Guo X., 2004. Chromosomal rearrangement in Pectinidae revealed by rRNA loci and implications for bivalve evolution // Biology Bulletin. V. 207. P. 247–256. https://doi.org/10.2307/1543213
  33. World Register of Marine Species 2025. Available from: http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=213 (2025-01-20)
  34. Xiang J.-H., Desrosiers R.R., Dube F., 1993. Studies on the Chromosomes of the giant scallop Placopecten magellanicus (Gmelin) and the surf clam Spisula solidissima (Dillwyn) // The Japan Mendel Society Cytologia. V. 58. P. 125–132.
  35. Zhang L., Bao Z., Wang S., Huang X., Hu J., 2007. Chromosome rearrangements in Pectinidae (Bivalvia: Pteriomorphia) implied based on chromosomal localization of histone H3 gene in four scallops // Genetica. V. 130. P. 193–198. https://doi.org/10.1007/s10709-006-9006-8

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Мейоз Flexopecten glaber ponticus: A – метафаза I в неоплодотворенных и B – метафаза II в оплодотворенных яйцеклетках (14 бивалентов, стрелкой указано 1-е направительное тельце). Масштаб 2 мкм.

Скачать (320KB)
3. Рис. 2. Flexopecten glaber ponticus: А – метафаза митоза в эмбриональной клетке, B – гомологичные хромосомы кариотипа. Масштаб 2 мкм.

Скачать (154KB)
4. Рис. 3. Flexopecten glaber ponticus: идиограмма, построенная по данным табл. 1.

Скачать (144KB)
5. Рис. 4. Корреляционная зависимость между относительной длиной хромосом (Lr,%) и центромерным индексом (Ic,%) кариотипа Flexopecten glaber ponticus.

Скачать (90KB)
6. Рис. 5. Функциональный гермафродит Flexopecten glaber ponticus. A–C – гонады гребешков с разным объемом яичника, расположенного в дистальной части; D – гонада гребешка с двумя долями яичника, расположенными в проксимальной и дистальной частях; 1 – доля яичника; 2 – доля семенника.

Скачать (297KB)

© Российская академия наук, 2025