Характеристика эритрона головной почки и циркулирующей крови камбалы-глоссы (Platichthys flesus) на протяжении годового цикла

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Изучен состав эритрона головной почки (пронефроса) и циркулирующей крови у холодолюбивой камбалы-глоссы (Platichthys flesus L., 1758) на протяжении годового цикла. Эритрон пронефроса в основном представляли эритробласты (ЭБ) и базофильные нормобласты (БН). Содержание полихроматофильных нормобластов (ПН) было невелико (<2%). Максимальный размер эритроидного ростка гемопоэза в пронефросе зарегистрирован в постнерестовый период (апрель–июль). На него приходилось до 17% клеточной массы отпечатков. В крови преобладали БН и ПН, неспособные к пролиферации. Максимальное содержание этих клеточных форм так же отмечали в постнерестовый период. Клетки более ранних генераций (ЭБ) в крови не обнаружены. Рост продукции эритроидных клеток гемопоэтической тканью совпадал с увеличение числа циркулирующих эритроцитов в крови камбалы-глоссы (R2 0.608 и 0.991), что свидетельствовало о смещении эритроцитарного баланса в системе красной крови в пользу продукционных процессов. Рассматриваются факторы, ответственные за генерацию эритроцитов гемопоэтической тканью у рыб, находящихся в состоянии нереста.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. А. Солдатов

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук; Севастопольский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: alekssoldatov@yandex.ru
Россия, Севастополь; Севастополь

И. А. Парфенова

Севастопольский государственный университет

Email: alekssoldatov@yandex.ru
Россия, Севастополь

Т. А. Кухарева

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук

Email: alekssoldatov@yandex.ru
Россия, Севастополь

Н. Е. Шалагина

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук

Email: alekssoldatov@yandex.ru
Россия, Севастополь

В. Н. Рычкова

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского Российской академии наук

Email: alekssoldatov@yandex.ru
Россия, Севастополь

Список литературы

  1. Золотова Т.Е. 1989. Экспериментальное исследование кроветворения у рыб: Автореф. канд. дис. М.: МГУ.
  2. Солдатов А.А. 2005. Эритропоэз и концентрация метгемоглобина в крови кефали-сингиля (Liza aurata, Risso) на протяжении годового цикла // Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН. V. 1. С. 182.
  3. Солдатов А.А. 2023. Случаи спонтанного роста концентрации метгемоглобина в крови костистых рыб на протяжении годового цикла // Биология внутр. вод. № 4. С. 549. https://doi.org/10.31857/S032096522304023X
  4. Al-Hassan L.A.J, Al-Abood A.Y., Al-Seyab A.A. 1990. Seasonal variations in the haemoglobin concentration and haematocrit values of Silurus triostegus // Acta Ichthyol. et Piscatoria. V. 20. Iss. 1. P. 99. https://doi.org/10.3750/AIP1990.20.1.08
  5. Andreyeva A.Y., Soldatov A.A., Kukhareva T.A. 2017. Black scorpionfish (Scorpaena porcus) hemopoiesis: Analysis by flow cytometry and light microscopy // Anatom. Rec. V. 300. Iss. 11. P. 1993. https://doi.org/10.1002/ar.23631
  6. Chou C-F., Tohari S., Brenner S., Venkatesh B. 2004. Erythropoietin gene from a teleost fish, Fugu rubripes // Blood. V. 104. P. 1498. https://doi.org/10.1182/blood-2003-10-3404
  7. Chu C.Y., Cheng C.H., Yang C.H., Huang C.J. 2008. Erythropoietins from teleosts // Cell Mol. Life Sci. V. 65. P. 3545. https://doi.org/10.1007/s00018-008-8231-y
  8. El-Saydah H.A.-A., Abdu S.B.S., El-Sayed T.A., Fouad H.F. 2010. Haemopoiesis in the head kidney of tilapia, Oreochromis niloticus (Teleostei: Cichlidae): a morphological (optical and ultrastructural) study // Fish Physiol. Biochem. V. 36. P. 323. https://doi.org/10.1007/s10695-008-9297-z
  9. Fischer U., Ototake M., Nakanishi T. 1998. Life span of circulating blood cells in Ginbuna crucian carp (Carassius auratus langsdorfii) // Fish Shellfish Immunol. V. 8. P. 339. https://doi.org/10.1006/fsim.1998.0144
  10. Hammer Ø., Harper D.A.T. 2006. Paleontological data analysis. Blackwell: Oxford. https://doi.org/10.1002/jqs.1107
  11. Hilge V., Klinger H. 1978. Changes in the hemogram of the male European eel (Anguilla anguilla) during induced maturation. ICES CM.
  12. Houston A.H. 1990. Blood and circulation // Methods for fish biology. Bethesda. Am. Fish Soc. P. 273. https://doi.org/10.1080/21658005.2013.846963
  13. Jagoe H.C., Welter D.A. 2011. Quantitative comparisons of the morphology and ultrastructure of erythrocyte nuclei from seven freshwater fish species // Can. J. Zool. V. 73. Iss. 10. P. 1951. https://doi.org/10.1139/z95-229
  14. Jawad L.A., Al-Mukhtar M.A., Ahmed H.K. 2004. The relationship between haematocrit and some biological parameters of the Indian shad, Tenualosa ilisha (Family Clupeidae) // Anim. Biodiver. Conservat. V. 27. Iss. 2. P. 47.
  15. Joshi P.C. 1989. Seasonal changes in the blood parameters of a hill-stream teleost, Channa gachua // Comp. Physiol. Ecol. V. 14. Iss. 2. P. 7.
  16. Kondera E. 2019. Haematopoiesis and Haematopoietic Organs in Fish // Sci. Ann. Polish Soc. Anim. Production. V. 15. P. 9. https://doi.org/10.5604/01.3001.0013.453
  17. Kulkeaw K., Sugiyama D. 2012. Zebrafish erythropoiesis and the utility of fish as models of anemia // Stem Cell Res. Ther. V. 3. Iss. 6. P. 55. https://doi.org/10.1186/scrt146
  18. Lai J.C.C., Kakuta I., Mok H.O.L. et al. 2006. Effects of moderate and substantial hypoxia on erythropoietin levels in rainbow trout kidney and spleen // J. Exp. Biol. V. 209. P. 2734. https://doi.org/10.1242/jeb.02279
  19. Mahoney J.B., McNulty J.K. 1992. Disease-associated blood changes and normal seasonal hematological variation in winter flounder in the Hudson-Raritan Estuary // Trans. Amer. Fish Soc. V. 121. Iss. 2. P. 261. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1992)121<0261:NDBCAN>2.3.CO;2
  20. Moritz K.M., Lim G.B., Wintour E.M. 1997. Developmental regulation of erythropoietin and erythropoiesis // Am. J. Physiol. V. 273. P. R1829. https://doi.org/10.1152/ajpregu. 1997.273.6.R1829
  21. Obeagu E. I. 2015. A review on Erythropoietin // Int. J. Advanced Res. Biol. Sci. 2015. V. 2. Iss. 4. P. 35.
  22. Ochiai A., Ogawa M., Umeda S., Taniguchi N. 1975. Change of blood properties of maturing japan eel at hormonal influences // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. V. 41. Iss. 6. P. 609.
  23. Phillips M.C.L., Moyes C.D., Tufts B.L. 2000. The effects of cell ageing on metabolism in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) red blood cells // J. Exp. Biol. V. 203. Iss. 6. P. 1039. https://doi.org/10.1242/jeb.203.6.1039
  24. Pottinger T.G., Pickering A.D. 1987. Androgen levels and erythrocytosis in maturing brown trout, Salmo trutta L. // Fish. Physiol. Biochem. V. 3. Iss. 3. 121. https://doi.org/10.1007/BF02180413
  25. Ribera D., Narbonne J.F., Daubeze M., Michel X. 1989. Characterization, tissue distribution and sexual differences of some parameters related to lipid peroxidation in mussels // Mar. Environ. Res. V. 28. P. 279.
  26. Sales C.F., Silva R.F., Amaral M.G.С. et al. 2017. Comparative histology in the liver and spleen of three species of freshwater teleost // Neotrop. Ichthyol. V. 15. Iss. 1. e160041. https://doi.org/10.1590/1982-0224-20160041
  27. Sarrimanolis J., Brooking A., Roberts M., Crockett E.L. 2020. Characterization of the hypoxia-inducible factor-1 pathway in hearts of Antarctic notothenioid fishes // Comp. Biochem. Physiol. B. Biochem. Mol. Biol. V. 250. P. 110505. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2020.110505
  28. Sharma T., Joshi B.D. 1985. Effect of seasonal variation on some haematologic values of hill stream fish Torputitora // J. Adv. Zool. V. 6. Iss. 1. P. 39.
  29. Shulman G.E., Love R.M. 1999. The Biochemical Ecology and Marine Fishes // Adv. Mar. Biol. 36. London: Acad Press. https://doi.org/10.1023/A:1012639928289
  30. Soldatov A.A. 2005a. Physiological aspects of effects of urethane anesthesia on the organism of marine fishes // Hydrobiol. J. V. 41. Iss. 1. P. 113. https://doi.org10.1615/HydrobJ.v41.i1.130
  31. Soldatov A.A. 2005b. Peculiarities of organization and functioning of the fish red blood system (review) // J. Evol. Biochem. Physiol. V. 41. Iss. 3. P. 272. https://doi.org/10.1007/s10893-005-0060-0
  32. Soldatov A.A. 2012. On the issue of classification of the hypoxic states of the aquatic organisms // Hydrobiol. J. V. 48. No 4. P. 3. https://doi.org/10.1615/HydrobJ.v48.i4.10
  33. Soldatov A.A. 2023. Monocyclicity in the function of the erythroid hematopoietic lineage in teleost fish exemplified by Platichthys Flesus (Linnaeus, 1758) // Doklady Biol. Sci. V. 512. Iss. 1. P. 307. https://doi.org/10.1134/S0012496623700564
  34. Wickramasinghe S.N. 1993. Erythropoietin and the human kidney: evidence for an evolutionary link from studies of Salmo gairdneri // Comp. Biochem. Physiol. V. 104A. P. 63. https://doi.org/10.1016/0300-9629(93) 90009-s
  35. Witeska M. 2013. Erythrocytes in teleost fishes: a review // Zool. Ecol. V. 23. Iss. 4. P. 275. https://doi.org/10.1080/21658005.2013.846963
  36. Zinkernagel A.S., Johnson R.S., Nizet V. 2007. Hypoxia inducible factor (HIF) function in innate immunity and infection (review) // J. Mol. Med. 2007. V. 85. P. 1339. https://doi.org/10.1007/s00109-007-0282-2

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Эритроидные элементы крови и головной почки камбалы-глоссы: a – ЭБ; б – БН; в – ПН (показаны стрелкой).

Скачать (217KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Содержание незрелых эритроидных форм в пронефросе и крови камбалы-глоссы на протяжении годового цикла (полигоны распределения): а – общее содержание незрелых эритроидных форм в пронефросе и крови; б – содержание отдельных незрелых эритроидных форм в пронефросе; в – содержание отдельных незрелых эритроидных форм в крови; по оси абсцисс – нулевая точка соответствует началу календарного года.

Скачать (280KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Уровень незрелых эритроидных форм в пронефросе (a), крови (б) и число циркулирующих эритроцитов в крови (в) у камбалы-глоссы на протяжении годового цикла (ранжирование с шагом 3 мес). 1 – нерестовый период, 2 – постнерестовый период, 3 – относительный функциональный покой, 4 – преднерестовый период, * – достоверно (при p <0.001).

Скачать (114KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Корреляционные отношения для систем: а – “незрелых эритроцитов пронефроса – число эритроцитов в крови”, б – “незрелых эритроцитов крови – число эритроцитов в крови”.

Скачать (175KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024