Влияние конъюгата бруцеллина с наночастицами золота на иммунный ответ и фагоцитоз бруцелл

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Получен конъюгат наночастиц золота (15 нм) с бруцеллином — полисахаридно-белковым комплексом, выделенным из вакцинного штамма бруцелл. Полученным конъюгатом проводили вакцинацию белых мышей. Препарат вводили внутрибрюшинно трехкратно с интервалом в 7 дней. После чего всем животным инъецировали суспензию клеток вакцинного штамма Brucella abortus 82. С использованием клеточного пролиферативного теста показано, что в группе животных, иммунизированных конъюгатом бруцеллина с наночастицами золота, фагоцитирующие клетки и спленоциты обладали более высокой метаболической активностью по сравнению с группой, иммунизированной нативным антигеном. Причем эта тенденция усиливалась после введения вакцинного штамма. Наиболее высокий титр антител был у животных, иммунизированных конъюгатом бруцеллина с наночастицами золота (1 : 2560 исходно и 1 : 10240 после стимуляции вакцинным штаммом). Важно, что при проведении опсонофагоцитарной реакции оказался весьма высоким уровень опсонизирующих антител, которые способствуют нейтрализации персистирующих в организме животных бактерий.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Л. А. Дыкман

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов — обособленное структурное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Саратовский научный центр Российской академии наук”

Автор, ответственный за переписку.
Email: dykman_l@ibppm.ru
Россия, Саратов, 410049

С. А. Староверов

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов — обособленное структурное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Саратовский научный центр Российской академии наук”

Email: dykman_l@ibppm.ru
Россия, Саратов, 410049

Р. Д. Вырщиков

Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов — обособленное структурное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра “Саратовский научный центр Российской академии наук”

Email: dykman_l@ibppm.ru
Россия, Саратов, 410049

Список литературы

  1. Бухарин О.В. // Вестник Московского университета. Сер. 16. Биология. 2008. № 1. С. 6–13.
  2. Евдокимова Н.В., Черненькая Т.В. // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. 2013. Т. 15. № 3. С. 192–197.
  3. Bigger J.W. // Lancet. 1944. V. 244. P. 497–500. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(00)74210-3
  4. Moyed H.S., Broderick S.H. // J. Bacteriol. 1986. V. 166. P. 399–403. https://doi.org/10.1128/jb.166.2.399-403.1986
  5. Costerton J.W., Stewart P.S., Greenberg E.P. // Science. 1999. V. 284. P. 1318–1322. https://doi.org/10.1126/science.284.5418.1318
  6. Бойченко М.Н., Кравцова Е.О., Буданова Е.В. Белая О.Ф., Малолетнева Н.В., Умбетова К.Т. // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2020. Т. 25. № 1. С. 35–40. https://doi.org/10.17816/EID35180
  7. Бойченко М.Н., Кравцова Е.О., Зверев В.В. // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2019. № 5. С. 61–72. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-5-61-72
  8. Pappas G., Akritidis N., Bosilkovski M., Tsianos E. // N. Engl. J. Med. 2005. V. 352. P. 2325–2336. https://doi.org/10.1056/NEJMra050570
  9. Atluri V.L., Xavier M.N., de Jong M.F., den Hartigh A.B., Tsolis R.M. // Annu. Rev. Microbiol. 2011. V. 65. P. 523–541. https://doi.org/10.1146/annurev-micro-090110-102905
  10. Al Dahouk S., Nöckler K. // Expert Rev. Anti-Infect. Ther. 2011. V. 9. P. 833–845. https://doi.org/10.1586/eri.11.55
  11. Hans R., Yadav P.K., Zaman M.B., Poolla R., Thavaselvam D. // Front. Nanotechnol. 2023. V. 5. 1132783. https://doi.org/10.3389/fnano.2023.1132783
  12. Galińska E.M., Zagórski J. // Ann. Agric. Environ. Med. 2013. V. 20. P. 233–238.
  13. Староверов С.А., Дыкман Л.А. // Российские нанотехнологии. 2013. Т. 8. № 11-12. С. 118–122. https://doi.org/10.1134/S1995078013060165
  14. Ko J., Splitter G.A. // Clin. Microbiol. Rev. 2003. V. 16. P. 65–78. https://doi.org/10.1128/cmr.16.1.65-78.2003
  15. Ficht T.A., Kahl-McDonagh M.M., Arenas-Gamboa A.M., Rice-Ficht A.C. // Vaccine. 2009. V. 27. Suppl. 4. P. D40–D43. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2009.08.058
  16. Avila-Calderon E.D., Lopez-Merino A., Sriranganathan N., Boyle S.M., Contreras-Rodriguez A. // Biomed. Res. Int. 2013. V. 2013. 743509. https://doi.org/10.1155/2013/743509
  17. Wang Z., Wu Q. // Curr. Pharm. Biotechnol. 2013. V. 14. P. 887–896. https://doi.org/10.2174/1389201014666131226123016
  18. Abkar M., Lotfi A.S., Amani J., Eskandari K., Ramandi M.F., Salimian J. et al. // Vet. Res. Commun. 2015. V. 39. P. 217–228. https://doi.org/10.1007/s11259-015-9645-2
  19. Lopes Chaves L., Dourado D., Prunache I.-B., Manuelle Marques da Silva P., Tacyana dos Santos Lucena G., Cardoso de Souza Z. et al. // Int. J. Pharm. 2024. V. 659. 124162. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2024.124162
  20. Zhuo Y., Zeng H., Su C., Lv Q., Cheng T., Lei L. // J. Nanobiotechnology. 2024. V. 22. 480. https://doi.org/10.1186/s12951-024-02758-0
  21. Liang J., Yao L., Liu Z., Chen Y., Lin Y., Tian T. // Small. 2025. V. 21. № 1. 2407649. https://doi.org/10.1002/smll.202407649
  22. Goetz M., Thotathil N., Zhao Z., Mitragotri S. // Bioeng. Transl. Med. 2024. V. 9. № 4. e10663. https://doi.org/10.1002/btm2.10663
  23. Fries C.N., Curvino E.J., Chen J.-L., Permar S.R., Fouda G.G., Collier J.H. // Nat. Nanotechnol. 2021. V. 16. № 4. P. 1–14. https://doi.org/10.1038/s41565-020-0739-9
  24. Rajaiah P. // Discov. Med. 2024. V. 1. 58. https://doi.org/10.1007/s44337-024-00080-0
  25. Badten A.J., Torres A.G. // Vaccines. 2024. V. 12. 313. https://doi.org/10.3390/vaccines12030313
  26. Dykman L.A. // Expert Rev. Vaccines. 2020. V. 19. P. 465–477. https://doi.org/10.1080/14760584.2020.1758070
  27. Sengupta A., Azharuddin M., Al-Otaibi N., Hinkula J. // Vaccines. 2022. V. 10. 505. https://doi.org/10.3390/vaccines10040505
  28. Miauton A., Audran R., Besson J., Hajjami H.-M.-E., Karlen M., Warpelin- Decrausaz L. et al. // eBioMedicine. 2024. V. 99. 104922. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2023.104922
  29. Загоскина Т.Ю., Марков Е.Ю., Калиновский А.И., Голубинский Е.П. // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2001. № 3. С. 65–69.
  30. Staroverov S.A., Vyrshchikov R.D., Bogatyrev V.A., Dykman L.A. // Int. Immunopharmacol. 2024. V. 133. 112121. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2024.112121
  31. Frens G. // Nat. Phys. Sci. 1973. V. 241. P. 20–22. https://doi.org/10.1038/physci241020a0
  32. De Jesus A., Pusec C.M., Nguyen T., Keyhani-Nejad F., Gao P., Weinberg S.E., Ardehali H. // STAR Protoc. 2022. V. 3. 101668. https://doi.org/10.1016/j.xpro.2022.101668
  33. Silver A.C. // J. Vis. Exp. 2018. V. 137. e58022. https://doi.org/10.3791/58022-v
  34. Berridge M.V., Herst P.M., Tan A.S. // Biotechnol. Annu. Rev. 2005. V. 11. P. 127–152. https://doi.org/10.1016/S1387-2656(05)11004-7
  35. Shah K., Maghsoudlou P. // Br. J. Hosp. Med. 2016. V. 77. P. C98–C101. https://doi.org/10.12968/hmed.2016.77.7.C98
  36. Дыкман Л.А., Богатырев В.А. // Биохимия. 1997. Т. 62. № 4. С. 411–418.
  37. Hufnagel M., Koch S., Kropec A., Huebner J. // Int. J. Food Microbiol. 2003. V. 88. № 2–3. P. 263–267. https://doi.org/10.1016/S0168-1605(03)00189-2
  38. Hu B.T., Kirch C., Harris S., Hildreth S.W., Madore D.V., Quataert S.A. // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2005. V. 12. № 2. P. 287–295. https://doi.org/10.1128/CDLI.12.2.287-295.2005
  39. Maleki M., Salouti M., Ardestani M.S., Talebzadeh A. // Artif. Cells Nanomed. Biotechnol. 2019. V. 47. P. 4248–4256. https://doi.org/10.1080/21691401.2019.1687490
  40. Dwyer M., Gadjeva M. // Methods Mol. Biol. 2014. V. 1100. P. 373–379. https://doi.org/10.1007/978-1-62703-724-2_32
  41. Salehi S., Hohn C.M., Penfound T.A., Dale J.B. // mSphere. 2018. V. 3. e00617–е00618. https://doi.org/10.1128/msphere.00617-18
  42. Leung S., Collett C.F., Allen L., Lim S., Maniatis P., Bolcen S.J. et al. // Vaccines. 2023. V. 11. 1703. https://doi.org/10.3390/vaccines11111703
  43. Kizilbash N., Suhail N., Soliman M., Elmagzoub R.M., Marsh M., Farooq R. // Curr. Pharm. Biotechnol. 2025. https://doi.org/10.2174/0113892010363803250110052220 (in press)
  44. Mandal S. // JETIR. 2025. V. 12. P. a959– a974.
  45. Teimouri H., Taheri S., Saidabad F.E., Nakazato G., Maghsoud Y., Babaei A. // Biomed. Pharmacother. 2025. V. 183. 117844. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2025.117844

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Определение пролиферативной активности перитонеальных макрофагов (а) и спленоцитов (б) при иммунизации животных бруцеллином по различным схемам (OD — концентрация формазана в расчет на одну клетку, нг; К – контроль, ФСБ).

Скачать (86KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Определение пролиферативной активности перитонеальных макрофагов (а) и спленоцитов (б) при иммунизации животных бруцеллином после инъецирования животным клеток штамма B. abortus 82.

Скачать (97KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Дот-иммунонализ бруцеллина с использованием антисывороток, полученных при иммунизации животных Аг + НЧЗ (а), Аг (б), НЧЗ (в), ФСБ (г); мечение — конъюгат НЧЗ со стафилококковым белком А.

Скачать (225KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Количество КОЕ, выявленных в результате опсонофагоцитарной реакции сывороток мышей после иммунизации бруцеллином (а) и последующего после инъецирования животным клеток штамма B. abortus 82 (б).

Скачать (108KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025