Experimental models for studying skin burns

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

Skin burns caused by various physical and chemical factors represent a significant medical problem due to their frequent occurrence, difficulty of treatment and high probability of complications. The study of destructive and regenerative processes occurring in the skin during burns of various nature requires the development of experimental models that allow analyzing the course of the healing process and identifying key factors contributing to it. This review examines models of thermal, chemical, and radiation burns of the skin in experimental animals. Techniques for creating lesions and methods of analyzing the condition of the skin, as well as the scope of application of these models, are described.

Full Text

Restricted Access

About the authors

O. V. Payushina

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Author for correspondence.
Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

V. V. Bulgakova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

P. A. Doronina

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

D. A. Tsomartova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

E. V. Chereshneva

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

M. Yu. Ivanova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

E. S. Tsomartova

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

T. A. Lomanovskaya

I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation (Sechenov University)

Email: payushina@mail.ru
Russian Federation, Trubetskaya str. 8 bld. 1, Moscow 119991

References

  1. Белышева Т. С., Валиев Т. Т., Шатохина Е. А., Григоренко В. А., Полонская А. С., Киргизов К. И., Варфоломеева С. Р. Лучевой дерматит: современные представления о патогенезе, принципах профилактики и лечения // Российский журнал детской гематологии и онкологии. 2022. Т. 9. № 4. С. 81–87. https://doi.org/10.21682/2311-1267-2022-9-4-81-87
  2. Воробьева В. М., Лепилов А. В., Мотин Ю. Г., Смирнов А. К., Полухин Д. Г. Морфологическая оценка заживления кожной модели химического ожога под влиянием новых лекарственных композиций // Сибирское медицинское обозрение. 2011. № 68. С. 45–48.
  3. Гуляев А. Е., Шульгау З. Т., Сергазы Ш. Д., Юрина Н. В., Горячкин А. М., Богачев С. С., Проскурина А. С. Ранозаживляющее и противовоспалительное действие рекомбинантного ангиогенина человека // Биопрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2022. Т. 22. № 3. С. 293–307. https://doi.org/10.30895/2221-996X-2022-22-3-293-307
  4. Донсков С. А., Шестакова В. Г., Кочубей М. В., Добрынина В. К. Особенности повреждения кожных покровов различными препаратами бытовой химии (экспериментальное исследование) // Тверской медицинский журнал. 2020. № 4. С. 34–39.
  5. Кочкина А. В. Влияние пероксиредоксина 6 и паракринных факторов мезенхимальных стволовых клеток на цитокиновый профиль кожи крысы при химическом ожоге // Вестник новых медицинских технологий. 2017. Т. 24. № 1. С. 65–70.
  6. Кузнецов В. А., Попов С. В. Химические ожоги: патогенез, клиника, лечение // Комбустиология. 2003. № 16–17. URL: http://combustiolog.ru/journal/himicheskie-ozhogi-patogenez-klinika-lechenie/ (дата обращения: 23.05.2024).
  7. Легеза В. И., Гребенюк А. Н., Заргарова Н. И. К вопросу об эффективности применения радиопротекторов различного механизма действия при поражениях, типичных для радиационных аварий (экспериментальное исследование) // Медико-биологические и социально-психологические проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. 2013. № 1. С. 42–47.
  8. Лунёва К. А., Лунёв А. С., Клементьева О. Е., Терновская К. Э., Астрелина Т. А. Изучение путей миграции мезенхимальных стволовых клеток у животных с экспериментальным лучевым ожогом кожных покровов // Разработка и регистрация лекарственных средств. 2018. № 23. С. 130–134.
  9. Максимова Н. В., Люндуп А., Любимов Р. О., Галина А., Николенко В. Н. Патофизиологические аспекты процесса заживления ран в норме и при синдроме диабетической стопы // Вестник Российской академии медицинских наук. 2014. Т. 69. № 11–12. С. 110–117. https://doi.org/10.15690/vramn.v69i11-12.1192
  10. Миненко Н. А., Панов П. Б., Скворцов Ю. Р., Матвеенко А. В., Владимирова О. О., Ивантеева Е. П. Профилактика ожогов кожи, вызванных действием едкого натра // Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2010. № 32. С. 148–152.
  11. Павленко О. Ю., Бгатова Н. П., Макарова О. П., Рачковская Л. Н., Садыкова В. С., Викторова Ю. М. Особенности ультраструктурной организации фибробластов при различных подходах к лечению ожоговой раны кожи // Вестник Новосибирского государственного университета. Серия: Биология, клиническая медицина. 2006. Т. 4. № 3. С. 53–57.
  12. Писарева О. А., Арутюнян А. А., Шаланин В. В., Большакова О. В., Бессалова Е. Ю., Кубышкин А. В., Номеровская А. Ю., Еськова А. Ю. Патогенетические механизмы развития морфологических изменений кожи крыс при моделировании термического ожога // Кубанский научный медицинский вестник. 2018. Т. 25. № 6. С. 135–141. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2018-25-6-135-141
  13. Селиванов П. А., Бычкова Н. В., Калинина Н. М. Ожоговая травма: иммунологические аспекты (научный обзор) // Профилактическая и клиническая медицина. 2020. № 75. С. 58–63.
  14. Сорокина С. С., Карманова Е. Е., Попова Н. Р. Радиационный дерматит: патогенез, диагностика и классификация. Обзор // Радиация и риск (Бюллетень Национального радиационно-эпидемиологического регистра). 2023. Т. 32. № 4. С. 103–122. https://doi.org/10.21870/0131-3878-2023-32-4-103-122
  15. Султанова К. Т., Крышень К. Л., Боровкова К. Е., Гущин Я. А., Полюга Н. Л. Патогенез инфицированной ожоговой раны у крыс // Лабораторные животные для научных исследований. 2023. № 2. С. 35–42. https://doi.org/10.57034/2618723X-2023-02-03
  16. Тряпицына Г. А., Атаманюк Н. И., Обвинцева Н. А., Егорейченков Е. А., Пряхин Е. А., Важенин А. В., Кокнаев Г. Н., Новиков Е. В. Методика получения местного радиационного поражения кожи у мышей с использованием установки Кибер-Нож // Вопросы радиационной безопасности. 2016. № 81. С. 63–68.
  17. Тряпицына Г. А., Пряхин Е. А., Атаманюк Н. И., Шапошникова И. А., Обвинцева Н. А., Остроумов Ю. И., Семенкова Л. Н., Аклеев А. В. Влияние липосомального препарата, содержащего белки альфа-фетопротеин и гранулоцитарный колониестимулирующий фактор, на патогенез лучевого ожога кожи у мышей // Радиационная биология. Радиоэкология. 2018. Т. 58. № 3. С. 251–261. https://doi.org/10.7868/S0869803118030049
  18. Убайдуллаева В. У., Камилов У. Р., Фаязов А. Ж., Юнусов Х. Э. Морфологический контроль заживления термических ожогов кожи в эксперименте // Вестник экстренной медицины. 2020. Т. 13. № 6. С. 57–66.
  19. Шидин В. А., Аптекарь И. А., Ахматов А. В., Леднева Д. С., Марков А. А., Матвиенко В. В., Матусевич С. Л., Нургалиева А. Р., Соловьёв Г. С., Соловьёва О. Г., Спирина Ю. С., Стеблюк А. Н. Морфогенез кожного регенерата и локальные факторы его регуляции // Ульяновский медико-биологический журнал. 2023. № 4. С. 153–168. https://doi.org/10.34014/2227-1848-2023-4-153-168
  20. Al-Deen Said S., Jatana S., Ponti A. K., Johnson E. E., Such K. A., Zangara M. T., Madajka M., Papay F., McDonald C. Development of a reproducible porcine model of infected burn wounds // J. Biol. Methods. 2022. V. 9. № 1. P. e158. https://doi.org/10.14440/jbm.2022.379
  21. Andrade A. L.M., Parisi J. R., Brassolatti P., Parizotto N. A. Alternative animal model for studies of total skin thickness burns // Acta Cir. Bras. 2017. V. 32. № 10. P. 836–842. https://doi.org/10.1590/s0102-865020170100000005
  22. Andrews C. J., Kempf M., Kimble R., Cuttle L. Development of a consistent and reproducible porcine scald burn model // PLoS One. 2016. V. 11. № 9. P. e0162888. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0162888
  23. Andrews K., Mowlavi A., Milner S. M. The treatment of alkaline burns of the skin by neutralization // Plast. Reconstr. Surg. 2003. V. 111. № 6. P. 1918–1921. https://doi.org/10.1097/01.PRS.0000058953.16695.A7
  24. Anikina V. A., Sorokina S. S., Shemyakov A. E., Zamyatina E. A., Taskaeva I. S., Teplova P. O., Popova N. R. An experimental model of proton-beam-induced radiation dermatitis in vivo // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. № 22. P. 16373. https://doi.org/10.3390/ijms242216373
  25. Benson J. M., Seagrave J., Weber W. M., Santistevan C. D., Grotendorst G. R., Schultz G. S., March T. H. Time course of lesion development in the hairless guinea-pig model of sulfur mustard-induced dermal injury // Wound Repair Regen. 2011. V. 19. № 3. P. 348–357. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2011.00675.x
  26. Bernhardt T., Kriesen S., Manda K., Schlie C., Panzer R., Hildebrandt G., Vollmar B., Emmert S., Boeckmann L. Induction of radiodermatitis in nude mouse model using gamma irradiator IBL 637 // Skin Pharmacol. Physiol. 2022. V. 35. № 4. P. 224–234. https://doi.org/10.1159/000524596
  27. Burgher F., Mathieu L., Lati E., Gasser P., Peno-Mazzarino L., Blomet J., Hall A. H., Maibach H. I. Part 2. Comparison of emergency washing solutions in 70% hydrofluoric acid-burned human skin in an established ex vivo explants model // Cutan. Ocul. Toxicol. 2011. V. 30. № 2. P. 108–115. https://doi.org/10.3109/15569527.2010.534748
  28. Camargo C. P., Forner-Cordero A., Silva B. M., de Souza V. M., Cunha H. S., de Oliveira Feitosa Y., Campello G. A., Dos Santos P. H.G., Rego C. L., Carvalho H., Gemperli R. Effect of photobiomodulation with different wavelengths on radiodermatitis treatment // Plast. Reconstr. Surg. Glob. Open. 2023. V. 11. № 2. P. e4809. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000004809
  29. Chen X., Qin W., Wang L., Jin Y., Tu J., Yuan X. Autophagy gene Atg7 regulates the development of radiation-induced skin injury and fibrosis of skin // Skin Res. Technol. 2023. V. 29. № 6. P. e13337. https://doi.org/10.1111/srt.13337
  30. Chiang A., Bruze M., Fregert S., Gruvberger B. Chemical skin burns // Kanerva’s Occupational Dermatology / Eds John S., Johansen J., Rustemeyer T., Elsner P., Maibach H.; Cham.: Springer, 2018. P. 139–150. https://doi.org/10.1007/978-3-319-40221-5_13-2
  31. Choi Y., Jang Y., Cho Lee A. R. Evaluation of biomechanical and histological properties of corrosive chemical burns // Journal of Pharmaceutical Investigation. 2012. V. 42. P. 165–170. https://doi.org/10.1007/s40005-012-0027-2
  32. Dolgachev V. A., Ciotti S., Liechty E., Levi B., Wang S. C., Baker J. R., Hemmila M. R. Dermal nanoemulsion treatment reduces burn wound conversion and improves skin healing in a porcine model of thermal burn injury // J. Burn Care Res. 2021. V. 42. № 6. P. 1232–1242. https://doi.org/10.1093/jbcr/irab118
  33. Gallagher S., Kruger U., Josyula K., Rahul, Gong A., Song A., Sweet R., Makled B., Parsey C., Norfleet J., De S. Thermally damaged porcine skin is not a surrogate mechanical model of human skin // Sci. Rep. 2022. V. 12. № 1. P. 4565. https://doi.org/10.1038/s41598-022-08551-z
  34. Gross-Amat O., Guillen M., Salmon D., Nataf S., Auxenfans C. Characterization of a topically testable model of burn injury on human skin explants // Int. J. Mol. Sci. 2020. V. 21. № 18. P. 6956. https://doi.org/10.3390/ijms21186956
  35. Güzey S., Dal A. D., Şahin İ., Nişancı M., Yavan İ. A new experimental burn model with an infrared heater // Ulus. Travma Acil Cerrahi Derg. 2016. V. 22. № 5. P. 412–416. https://doi.org/10.5505/tjtes.2015.93464
  36. Hao X., Chi Y., Bai H., Li S., Han S., Duan H., Chang Y., Hu F., Wei B., Zheng J., Chai J., Liu L. Establishment of a Bama miniature pig burn model with different burn depths // Gland Surg. 2022. V. 11. № 10. P. 1647–1655. https://doi.org/10.21037/gs-22-476
  37. Hofmann E., Fink J., Eberl A., Prugger E. M., Kolb D., Luze H., Schwingenschuh S., Birngruber T., Magnes C., Mautner S. I., Kamolz L. P., Kotzbeck P. A novel human ex vivo skin model to study early local responses to burn injuries // Sci. Rep. 2021. V. 11. № 1. P. 364. https://doi.org/10.1038/s41598-020-79683-3
  38. Jain A. K., Tewari-Singh N., Inturi S., Orlicky D. J., White C. W., Agarwal R. Histopathological and immunohistochemical evaluation of nitrogen mustard-induced cutaneous effects in SKH-1 hairless and C57BL/6 mice // Exp. Toxicol. Pathol. 2014. V. 66. № 2–3. P. 129–138. https://doi.org/10.1016/j.etp.2013.11.005
  39. Kohlhauser M., Tuca A., Kamolz L. P. The efficacy of adipose-derived stem cells in burn injuries: a systematic review // Cell. Mol. Biol. Lett. 2024. V. 29. № 1. P. 10. https://doi.org/10.1186/s11658-023-00526-w
  40. Lateef Z., Stuart G., Jones N., Mercer A., Fleming S., Wise L. The cutaneous inflammatory response to thermal burn injury in a murine model // Int. J. Mol. Sci. 2019. V. 20. № 3. P. 538. https://doi.org/10.3390/ijms20030538
  41. Li C., Srivastava R. K., Weng Z., Croutch C. R., Agarwal A., Elmets C. A., Afaq F., Athar M. Molecular mechanism underlying pathogenesis of lewisite-induced cutaneous blistering and inflammation: Chemical chaperones as potential novel antidotes // Am. J. Pathol. 2016. V. 186. № 10. P. 2637–2649. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2016.06.012
  42. Muhammad G., Xu J., Bulte J. W.M., Jablonska A., Walczak P., Janowski M. Transplanted adipose-derived stem cells can be short-lived yet accelerate healing of acid-burn skin wounds: a multimodal imaging study // Sci. Rep. 2017. V. 7. № 1. P. 4644. https://doi.org/10.1038/s41598-017-04484-0
  43. Mulder P. P.G., Raktoe R. S., Vlig M., Elgersma A., Middelkoop E., Boekema B. K.H.L. Full skin equivalent models for simulation of burn wound healing, exploring skin regeneration and cytokine response // J. Funct. Biomater. 2023. V. 14. № 1. P. 29. https://doi.org/10.3390/jfb14010029
  44. Nie S., Ren C., Liang X., Cai H., Sun H., Liu F., Ji K., Wang Y., Liu Q. Supramolecular hydrogel-wrapped gingival mesenchymal stem cells in cutaneous radiation injury // Cells. 2022. V. 11. № 19. P. 3089. https://doi.org/10.3390/cells11193089
  45. Paramasivam T., Maiti S. K., Palakkara S., Rashmi, Mohan D., Manjunthaachar H. V., Karthik K., Kumar N. Effect of PDGF-B gene-activated acellular matrix and mesenchymal stem cell transplantation on full thickness skin burn wound in rat model // Tissue Eng. Regen. Med. 2021. V. 18. № 2. P. 235–251. https://doi.org/10.1007/s13770-020-00302-3
  46. Parvez M. A., Yashiro K., Nagahama Y., Tsunoi Y., Saitoh D., Sato S., Nishidate I. In vivo visualization of burn depth in skin tissue of rats using hemoglobin parameters estimated by diffuse reflectance spectral imaging // J. Biomed. Opt. 2024. V. 29. № 2. P. 026003. https://doi.org/10.1117/1.JBO.29.2.026003
  47. Reisz J. A., Bansal N., Qian J., Zhao W., Furdui C. M. Effects of ionizing radiation on biological molecules--mechanisms of damage and emerging methods of detection // Antioxid. Redox Signal. 2014. V. 21. № 2. P. 260–292. https://doi.org/10.1089/ars.2013.5489
  48. Roldan T. L., Li S., Laskin J. D., Gao D., Sinko P. J. Depilatory double-disc mouse model for evaluation of vesicant dermal injury pharmacotherapy countermeasures // Animal Model Exp. Med. 2023. V. 6. № 1. P. 57–65. https://doi.org/10.1002/ame2.12304
  49. Rübe C. E., Freyter B. M., Tewary G., Roemer K., Hecht M., Rübe C. Radiation dermatitis: Radiation-induced effects on the structural and immunological barrier function of the epidermis // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. № 6. P. 3320. https://doi.org/10.3390/ijms25063320
  50. Schmidlin C. J., Rojo de la Vega M., Perer J., Zhang D. D., Wondrak G. T. Activation of NRF2 by topical apocarotenoid treatment mitigates radiation-induced dermatitis // Redox Biol. 2020. V. 37. P. 101714. https://doi.org/10.1016/j.redox.2020.101714
  51. Schneider V., Kruse D., de Mattos I. B., Zöphel S., Tiltmann K. K., Reigl A., Khan S., Funk M., Bodenschatz K., Groeber-Becker F. A 3D in vitro model for burn wounds: Monitoring of regeneration on the epidermal level // Biomedicines. 2021. V. 9. № 9. P. 1153. https://doi.org/10.3390/biomedicines9091153
  52. Seo C. H., Cui H.S, Kim J. B. Calpastatin-mediated inhibition of calpain ameliorates skin scar formation after burn injury // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 11. P. 5771. https://doi.org/10.3390/ijms22115771
  53. Seswandhana R., Anzhari S., Ghozali A., Dachlan I., Wirohadidjojo Y. W., Aryandono T. A modified method to create a porcine deep dermal burn model // Ann. Burns Fire Disasters. 2021. V. 34. № 2. P. 187–191.
  54. Shen A.H., Borrelli M. R., Adem S., Deleon N. M.D., Patel R. A., Mascharak S., Yen S. J., Sun B. Y., Taylor W. L. 4th, Januszyk M., Nguyen D. H., Momeni A., Gurtner G. C., Longaker M. T., Wan D. C. Prophylactic treatment with transdermal deferoxamine mitigates radiation-induced skin fibrosis // Sci. Rep. 2020. V. 10. № 1. P. 12346. https://doi.org/10.1038/s41598-020-69293-4
  55. Silva-Correa C.R., Rosas-Cruz G.P., Calderón-Peña A.A., Torre V. E.V., Aspajo-Villalaz C.L., Castañeda-Carranza J.A., Dionicio-Rosado D.Y., Gómez-Arce R.M., Rodríguez-Silva C.N., Rosario-Chávarri J.D., Cruzado-Razco J.L. Effects of Solanum tuberosum L. ointment on second-degree burns in mice // Vet. World. 2023. V. 16. № 12. P. 2440–2445. https://doi.org/10.14202/vetworld.2023.2440-2445
  56. Silver F. H., Shah R. “Virtual biopsies” of normal skin and thermal and chemical burn wounds // Adv. Skin Wound Care. 2020. V. 33. № 6. P. 307–312. https://doi.org/10.1097/01.ASW.0000655480.87532.27Singer A.J., Taira B. R., Anderson R., McClain S.A., Rosenberg L. Does pressure matter in creating burns in a porcine model? // J. Burn Care Res. 2010. V. 31. № 4. P. 646–651. https://doi.org/10.1097/BCR.0b013e3181e4ca73
  57. Sulastri E., Lesmana R., Zubair M. S., Abdelwahab Mohammed A. F., Elamin K. M., Wathoni N. Ulvan/Silver nanoparticle hydrogel films for burn wound dressing // Heliyon. 2023. V. 9. № 7. P. e18044. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e18044
  58. Surolia R., Li F. J., Wang Z., Kashyap M., Srivastava R. K., Traylor A. M., Singh P., Dsouza K. G., Kim H., Pittet J. F., Zmijewski J. W., Agarwal A., Athar M., Ahmad A., Antony V. B. NETosis in the pathogenesis of acute lung injury following cutaneous chemical burns // JCI Insight. 2021. V. 6. № 10. P. e147564. https://doi.org/10.1172/jci.insight.147564
  59. Tobalem M., Wettstein R., Tschanz E., Plock J., Lindenblatt N., Harder Y., Rezaeian F. The burn comb model revisited // Burns. 2020. V. 46. № 3. P. 675–681. https://doi.org/10.1016/j.burns.2019.09.011
  60. Wang J., Wang C. Z., Salsbury J. R., Zhang J., Enkhbaatar P., Herndon D. N., El Ayadi A., Ansari N. H. Thermal injury induces early blood vessel occlusion in a porcine model of brass comb burn // Sci. Rep. 2021. V. 11. № 1. P. 12457. https://doi.org/10.1038/s41598-021-91874-0
  61. Wu L. J., Lin W., Liu J. J., Chen W. X., He W. J., Shi Y., Liu X., Li K. Transplantation of human induced pluripotent stem cell derived keratinocytes accelerates deep second-degree burn wound healing // World J. Stem Cells. 2023. V. 15. № 7. P. 713–733. https://doi.org/10.4252/wjsc.v15.i7.713
  62. Yang K., Kim S. Y., Park J. H., Ahn W. G., Jung S. H., Oh D., Park H. C., Choi C. Topical application of phlorotannins from brown seaweed mitigates radiation dermatitis in a mouse model // Mar. Drugs. 2020a. V. 18. № 8. P. 377. https://doi.org/10.3390/md18080377
  63. Yang X., Ren H., Guo X., Hu C., Fu J. Radiation-induced skin injury: pathogenesis, treatment, and management // Aging (Albany NY). 2020b. V. 12. № 22. P. 23379–23393. https://doi.org/10.18632/aging.103932
  64. Yang Y., Liu L., Guo Z., Li L., Shao Y., Song M., Sun B. Investigation and assessment of neutrophil dysfunction early after severe burn injury // Burns. 2021. V. 47. № 8. P. 1851–1862. https://doi.org/10.1016/j.burns.2021.02.004
  65. Yao C., Zhou Y., Wang H., Deng F., Chen Y., Zhu X., Kong Y., Pan L., Xue L., Zhou X., Shi C., Sheng X. Adipose-derived stem cells alleviate radiation-induced dermatitis by suppressing apoptosis and downregulating cathepsin F expression // Stem Cell Res. Ther. 2021. V. 12. № 1. P. 447. https://doi.org/10.1186/s13287-021-02516-1
  66. Ye H., De S. Thermal injury of skin and subcutaneous tissues: A review of experimental approaches and numerical models // Burns. 2017. V. 43. № 5. P. 909–932. https://doi.org/10.1016/j.burns.2016.11.014
  67. Yessimsiitova Z. B., Zharkova I. M., Tleubekkyzy P. L., Boxenova S. K., Kozhamzharova A. S., Ziyayeva G., Duisemkhan R. K. Pathohistological study of rat skin at chemical burn with acetic acid // Фармация Казахстана. 2022. № 5. P. 100–106. https://doi.org/10.53511/pharmkaz.2022.83.28.014
  68. Zhao Y. C., Wang H. Y., Li Y. F., Yang X. Y., Li Y., Wang T. J. The action of topical application of Vitamin B12 ointment on radiodermatitis in a porcine model // Int. Wound J. 2023. V. 20. № 2. P. 516–528. https://doi.org/10.1111/iwj.13899
  69. Zhou Z., Xun J., Wu C., Ji C., Ji S., Shu F., Wang Y., Chen H., Zheng Y., Xiao S. Acceleration of burn wound healing by micronized amniotic membrane seeded with umbilical cord-derived mesenchymal stem cells // Mater. Today Bio. 2023. V. 20. P. 100686. https://doi.org/10.1016/j.mtbio.2023.100686

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences