ANTIDIABETIC EFFECT OF A NEW ORIGINAL NT-3 DIPEPTIDE MIMETIC

S. S. Yagubova; Ягубова С. С.; M. A. Chernyshevskaya; Чернышевская М. А.; R. U. Ostrovskaya; Островская Р. У.; T. A. Gudasheva; Гудашева Т. А.; S. B. Seredenin; Середенин С. Б.

doi:10.31857/S2686738923700336

Антидиабетический эффект нового оригинального дипептидного миметика NT-3

Авторы: Ягубова С.С.¹, Чернышевская М.А.¹, Островская Р.У.¹, Гудашева Т.А.¹, Середенин С.Б.¹
Учреждения:
1. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение “НИИ фармакологии имени В.В. Закусова”
Выпуск: Том 512, № 1 (2023)
Страницы: 417-421
Раздел: Статьи
URL: https://cardiosomatics.ru/2686-7389/article/view/651065
DOI: https://doi.org/10.31857/S2686738923700336
EDN: https://elibrary.ru/PUTHWA
ID: 651065

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ
Доступ закрыт

Доступ предоставлен
Доступ закрыт

Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

Ранее установлено, что оригинальный дипептидный миметик 4-й петли NT-3 гексаметилендиамид бис-(N-моносукцинил-L-аспарагинил-L-аспарагина) (ГТС-301) обладает выраженным нейропротективным эффектом in vitro в концентрациях 10^–5–10^–12 М. В настоящем исследовании в экспериментах на стрептозотоциновой модели диабета у мышей линии C57Bl/6 установлено, что ГТС-301 при 32-дневном внутрибрюшинном введении в дозах 0.1 и 0.5 мг/кг обладает антидиабетической активностью по показателям снижения гипергликемии, полидипсии и увеличения выживаемости животных. Полученные результаты подтверждают концепцию сходства нейрохимических механизмов регуляции функций нейронов и β-клеток.

Ключевые слова

NT-3, низкомолекулярный миметик, дипептид, ГТС-301, стрептозотоцин, диабет, антидиабетическая активность, мыши C57Bl/6

Список литературы

Gudasheva T.A., Povarnina P.Y., Tarasiuk A.V., et al. Low-molecular mimetics of nerve growth factor and brain-derived neurotrophic factor: Design and pharmacological properties // Med Res Rev. 2021. V. 41. № 5. P. 2746–2774.
Гудашева Т.А., Сазонова Н.М., Тарасюк А.В. и др. Первый дипептидный миметик нейротрофина-3: дизайн и фармакологические свойства // Доклады Российской Академии наук. Науки о жизни. 2022. Т. 505. С. 54–60.
Островская Р.У., Ягубова С.С. Общие механизмы в патогенезе болезни Альцгеймера и диабета: пути фармакологической коррекции // Психиатрия. 2014. Т. 61. № 1. С. 35–43.
Ostrovskaya R.U., Ivanov S.V. Neuroprotective Substances: Are they Able to Protect the Pancreatic Beta-Cells Too? // Endocrine, Metabolic & Immune Disorders – Drug Targets. 2022. V. 22. P. 834–841.
Watcho P., Stavniichuk R., Tane P., et al. Evaluation of PMI-5011, an ethanolic extract of Artemisia dracunculus L., on peripheral neuropathy in streptozotocin-diabetic mice // Int J Mol Med. 2011. V. 27. № 3. P. 299–307.
Hakim Z.S., Patel B.K., Goyal R.K. Effects of chronic ramipril treatment in streptozotocin-induced diabetic rats // Indian J Physiol Pharmacol. 1997. V. 41. № 4. P. 353–360.
Katoh-Semba R., Kaisho Y., Shintani A., et al. Tissue distribution and immunocytochemical localization of neurotrophin-3 in the brain and peripheral tissues of rats // J Neurochem. 1996. V. 66. № 1. P. 330–337.
Tazi A., Le Bras S., Lamghitnia H., et al. Neurotrophin-3 Increases Intracellular Calcium in a Rat Insulin-secreting Cell Line through Its Action on a Functional TrkC Receptor // J Biol Chem. 1996. V. 271. № 17. P. 10154–60.
Ono M., Ichihara J., Nonomura T., et al. Brain-Derived Neurotrophic Factor Reduces Blood Glucose Level in Obese Diabetic Mice but Not in Normal Mice // Biochem Biophys Res Commun. 1997. V. 238. № 2. P. 633–637.
El Ouaamari Y., Van den Bos J., Willekens B., et al. Neurotrophic Factors as Regenerative Therapy for Neurodegenerative Diseases: Current Status, Challenges and Future Perspectives // Int J Mol Sci. 2023. V. 24. № 4. P. 3866.
Christianson J.A., Ryals J.M., Johnson M.S., et al. Neurotrophic modulation of myelinated cutaneous innervation and mechanical sensory loss in diabetic mice // Neuroscience. 2007. V. 145. № 1. P. 303–313.
Akyol O., Sherchan P., Yilmaz G., et al. Neurotrophin-3 provides neuroprotection via TrkC receptor dependent pErk5 activation in a rat surgical brain injury model. // Exp Neurol. 2018. V. 307. P. 82–89.
Donaghue I.E., Tator C.H., Shoichet M.S. Sustained delivery of bioactive neurotrophin-3 to the injured spinal cord. // Biomater Sci. 2015. V. 3. № 1. P. 65–72.
Ji W.C., Li M., Jiang W.T., et al. Protective effect of brain-derived neurotrophic factor and neurotrophin-3 overexpression by adipose-derived stem cells combined with silk fibroin/chitosan scaffold in spinal cord injury. // Neurol Res. 2020. V. 42. № 5. P. 361–371.
Sun X., Zhang C., Xu J., et al. Neurotrophin-3-Loaded Multichannel Nanofibrous Scaffolds Promoted Anti-Inflammation, Neuronal Differentiation, and Functional Recovery after Spinal Cord Injury. // ACS Biomater Sci Eng. 2020. V. 6. № 2. P. 1228–1238.
Oudega M., Hao P., Shang J., et al. Validation study of neurotrophin-3-releasing chitosan facilitation of neural tissue generation in the severely injured adult rat spinal cord. // Exp Neurol. 2019. V. 312. P. 51–62.